Оптимизация способа беспересадочного сохранения in vitro микропобегов двух сортов персика

Для сохранения in vitro ценных сортов персика эффективно культивирование растений при низких положительных температурах. Целью данного исследования было изучение влияния концентраций хлорхолинхлорида (ССС) добавляемого в питательную среду для длительного культивирования на жизнеспособность, физиологические и морфо-анатомические показатели микропобегов персика сортов Bailey и Nemaguard для последующей оптимизации условий длительного беспересадочного сохранения in vitro при пониженной положительной температуре. Верхушки микропобегов in vitro без листьев помещали на среду 1/4 Мурасиге – Скуга + 60,0 г/л сахарозы и 0,2–1,0 г/л ССС. Экспланты помещали в холодильные камеры при температуре 6°С. Жизнеспособность эксплантов по окончании 12 месяцев сохранения составила 89−99%. В целом вегетативные структуры у исследуемых сортов при депонировании и при субкультивировании характеризуются нормальным анатомическим строением. У растений в условиях депонирования было выявлено изменение толщины листовой пластинки, как за счет толщины эпидермы, так и мезофилла, при этом изменялась и плотность паренхимной ткани. Коэффициент палисадности существенно не изменялся. Хранившиеся микропобеги 2 сортов персика не имели дефектов развития и признаков оводнения или некроза и сразу же восстановили свой потенциал к пролиферации во время культивирования на среде Мурасиге – Скуга с 0,75 мг/л 6-БАП после депонирования. Наибольший процент отрастания (100%) получен у эксплантов, сохранявшихся на среде, дополненной 0,2−0,4 г/л ССС. Полученные результаты предполагают возможность увеличения времени сохранения эксплантов персика изучаемых сортов при пониженной положительной температуре.

1. Бъядовский И.А. Влияние жасмоновой кислоты и пониженной температуры на возможность длительного хранения клоновых подвоев яблони в культуре in vitro // Садоводство и виноградарство. 2018. T. 5. C. 30-37. DOI: 10.31676/0235-2591-2018-5-30-37.

2. Егорова Н.А., Загорская М.С., Абдурашитов С.Ф. Особенности длительного сохранения мяты сортов Ажурная и Бергамотная в коллекции in vitro // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2022. Т. 12 (1). С. 64–75. DOI: 10.21285/2227-2925-2022-12-1-64-75

3. Иванова Н Н., Цюпка В.А., Корзина Н.В. Влияние состава питательной среды на сохранение жизнеспособности и генетической стабильности эксплантов хризантемы садовой при депонировании in vitro // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2023. Т. 13. № 4. С. 483–493. DOI: 10.21285/2227-2925-2023-13-4-483-493.

4. Иванова Н.Н., Корзина Н.В., Цюпка В.А., Челомбит С.В. Влияние условий сохранения in vitro на жизнеспособность и генетическую стабильность садовых растений // Таврический вестник аграрной науки. 2024. № 2 (38). С. 53–66. EDN: UPRRPG. DOI: 10.5281/zenodo.12178658.

5. Иванова Н.Н., Лесникова-Седошенко Н.П., Корзина Н.B. Клональное микроразмножение и сохранение земляники садовой сорта ’Крымчанка 87’ in vitro // Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. 2023. Т. 146:134–141. DOI: 10.36305/0513-1634-2023-146-134-141.

6. Иванова Н.Н., Гребенникова О.А. Динамика изменения биохимических показателей микропобегов в условиях депонирования in vitro // Таврический вестник аграрной науки. 2025. № 1 (41). С. 90–102. EDN: NLKJNO. DOI: 10.5281/zenodo.15147590.

7. Лесникова-Седошенко Н.П., Митрофанова О.В., Смыков А.В., Горина В.М. Применение биотехнологических методов в получении селекционных форм персика (Prunus persica (L.) Batch) и абрикоса (Prunus armeniaca L.) // Труды Гос. Никит. ботан. сада. 2007. Т. 128. С. 33–40.

8. Основы создания генобанка in vitro видов, сортов и форм декоративных, ароматических и плодовых культур: коллективная монография / под общ. ред. И.В. Митрофановой. Симферополь: ИТ «АРИАЛ», 2018. 260 с. DOI: 10.32514/978-5-907118-87-4

9. Arbeloa A., Marín J.A., Andreu P., García E., Lorente P. In vitro conservation of fruit trees by slow growth storage // Acta Horticulture. 2017. Vol. 1155. P. 101–106. DOI: 10.17660/ActaHortic.2017.1155.13.

10. Bettoni J.C., Wang M.R., Wang Q.C. In vitro regeneration, micropropagation and germplasm conservation of horticultural plants // Horticulturae. 2024. Vol. 10. Art. No. 45. DOI: 10.3390/horticulturae10010045.

11. Benelli C., Tarraf W., Izgu T., De Carlo A. In Vitro Conservation through Slow Growth Storage Technique of Fruit Species: An Overview of the Last 10 Years // Plants. 2022. Vol. 11. P. 3188. DOI: 10.3390/plants11233188.

12. Bidabadi S.S., Jain S.M. Cellular, molecular, and physiological aspects of in vitro plant regeneration // Plants. 2020. Vol. 9. P. 702. DOI: 10.3390/plants9060702.

13. Engelmann F. Biotechnology and conservation of plant biodiversity // Resources. 2013. Vol. 2. P. 73–95. DOI: 10.3390/resources2020073.

14. Gowthami R., Agrawal A., Chander S., Pandey R., Sharma N., Gupta S., Srivastava V., Malhotra E., Bansal S., Malik S., Mahendru-Singh S., Singh G. In vitro genеbank of India for safe conservation of horticultural plant diversity: four decades of milestones // 3 Biotech. 2025. Vol. 15(1). P. 11. DOI: 10.1007/s13205-024-04177-2.

15. Kumar A. Somaclonal variation. Potato genetics. Wallingford: CAB International, 1994. Р. 197−212.

16. Lukoševičiute V., Rugienius R., Staniene G., Blažyte A., Gelvonauskiene D., Bendokas V., Gelvonauskis B., Sasnauskas A., Stanys V., Bobinas Č. Low temperature storage of Fragaria sp. and Pyrus sp. genetic resources in vitro // Zemdirbyste. 2012. Vol. 99. P. 125– 130.

17. Mani M., Mathiyazhagan C., Dey A., Faisal M., Alatar A.A., Alok A., Shekhawat M.S. Micro-morpho-anatomical transitions at various stages of in vitro development of Crinum malabaricum Lekhak and Yadav: a critically endangered medicinal plant // Plant Biology. 2023. Vol. 25(1). P. 142-151. DOI: 10.1111/plb.13464.

18. Manokari M., Priyadharshini S., Shekhawat M.S. Microstructural and histochemical variations during in vitro to in vivo plant developments in Aloe vera (L.) Burm. f (Xanthorrhoeaceae) // Industrial Crops Products. 2021. Vol. 160. P. 113162. DOI: 10.1016/j.indcrop.2020.113162.

19. Manokari M., Priyadharshini S., Shekhawat M.S. Micro-structural stability of micropropagated plants of Vitex negundo L. // Microscopy and Microanalysis. 2021. Vol. 27(3). P. 626-634. DOI: 10.1017/s1431927621000283.

20. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture // Physiologia Plantarum. 1962. Vol. 15 (3). P. 473–497. DOI: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.

21. Okello D., Yang S., Komakech R., Rahmat E., Chung Y., Gang R., Kim Y-G, Omujal F., Kang Y. An in vitro propagation of Aspilia Africana (Pers.) C. D. Adams, and evaluation of its anatomy and physiology of acclimatized plants // Frontiers in Plant Science. 2021. Vol. 12. P. 704896. DOI: 10.3389/fpls.2021.704896.

22. Shekhawat M.S., Manokari M. Micromorphologicaland anatomical evaluation of in vitro and field transferred plants of Coccinia indica // Agricultural Research. 2018. Vol. 7. P. 135-144. DOI: 10.1007/s40003-018-0326-6.

23. Sota V., Kongjika E. Slow growth in vitro conservation of Zizyphus jujuba Mill. // Poljoprivreda i Sumarstvo. 2014. Vol. 60. P. 27-37.

24. Turdiyev T.T., Kovalchuk I.Y., Kabylbekova B.Z., Chukanova N.I., Frolov S.N. In vitro germplasm cold storage of fruit and berry plants of Kazakhstan // Eurasian Journal of Biosciences. 2020. Vol. 1219. P. 1213–1219.