Размножение селекционного материала Prunus armeniaca l. методами биотехнологии

   Важными преимуществами проведения селекционных исследований методами биотехнологии являются сохранение генетической стабильности растительного материала, возможность массового размножения и значительное сокращение сроков его получения. Абрикос (Prunus armeniaca L., семейство Rosaceae Juss.) – одна из наиболее важных косточковых плодовых культур в мире. В Никитском ботаническом саду – Национальном научном центре – методами биотехнологии продолжается получение гибридных форм для расширения сортового разнообразия и создания новых ценных
генотипов.

   Цель данной работы заключалась в отработке способов получения и размножения гибридного материала абрикоса методами биотехнологии для последующего ускоренного тестирования полученных in vitro растений в контролируемых условиях.

   В исследованиях использовали методы эмбриокультуры и клонального микроразмножения. На примере зародышей каждой из родительских пар сортов Кioto × Шалард 2 (форма 1), Колобок × Bergarouge (форма 2), Одиссей × Шалард 2 (форма 3), введенных в культуру in vitro, показано влияние генотипа на морфогенез проростков и развившихся микропобегов. Использование полноценных зародышей позволило индуцировать 100 % развитие полноценных проростков на безгормональной питательной среде Монье. Определены оптимальные условия, индуцирующие множественное адвентивное побегообразование in vitro у изучаемых селекционных форм. Были
испытаны различные концентрации цитокина 6-БАП и проанализированы морфогенетические реакции микропобегов на питательных средах DKW, SMM, MS, WPM и В5. Установлено, что среды DKW и MS способствовали развитию микропобегов и листьев у форм ‘Колобок’ × ‘Bergarouge’, ‘Одиссей’ × ‘Шалард 2’, тогда как для формы ‘Кioto’ × ‘Шалард 2’ более эффективной была среда SMM. Среда DKW, содержащая 0,75 мг/л 6-БАП, способствовала множественной
пролиферации микропобегов исследуемых форм абрикоса. Влияние генотипа также проявилось в снижении интенсивности размножения микропобегов формы ‘Одиссей’ × ‘Шалард 2’ (3,87 шт./эксплант) в последующих 3 и 4 субкультивированиях в сравнении с эксплантами ‘Кioto’ × ‘Шалард 2’(4,8 шт./эксплант) и ‘Колобок’ × ‘Bergarouge’ (4,2 шт./эксплант).

1. Бондарцев А.С. Шкала цветов: (Пособие для биологов при науч. и науч.-прикладных исследованиях). М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1954. 28 с.

2. Горина В.М., Корзин В.В., Корзина Н.В., Лукичева Л.А. История развития селекции абрикоса в Никитском ботаническом саду // Биология растений и садоводство: теории и инновации. 2022. № 1(162). С. 67-87. DOI: 10.36305/2712-7788-2022-1-162-67-87.

3. Здруйковская-Рихтер А.И. Эмбриокультура изолированных зародышей, генеративных структур и получение новых форм растений. Ялта: Крым-Farm-Trejding, 2003. 366 с. ISBN 966-572-242-5.

4. Костина К.Ф. Абрикос. Л.: Изд-во ВАСХНИЛ, 1936. 209 с.

5. Куклина А.Г., Цыбулько Н.С., Воронкова Т.В., Крамаренко Л.А. Биохимический состав плодов у сортов Prunus armeniaca (Rosaceae) московской селекции // Вестник КрасГАУ. 2023. № 7. Р. 184–190. DOI: 10.36718/1819-4036-2023-7-184-190.

6. Лесникова-Седошенко Н.П., Митрофанова О.В., Смыков А.В., Горина В.М. Применение биотехнологических методов в получении селекционных форм персика (Prunus persica (L.) Batch) и абрикоса (Prunus armeniaca L.) // Труды Гос. Никит. ботан. сада. 2007. Т. 128. С. 33-40.

7. Рихтер Ал.А., Рихтер В.А., Рихтер Ан.А. Эмбриокультура растений в создании новых сортов. Научное достояние докт. биол. наук А.И. Здруйковской-Рихтер : монография. Симферополь: ИТ «Ариал», 2022. 332 с. ISBN 978-5-907656-23-9.

8. Alburquerque N., Ruiz D., Burgos L., Petri C. Prunus armeniaca apricot. In Biotechnology of Fruit and Nut Crops. 2^nd Edition. R.E. Litz, F. Pliego-Alfaro, I. Hormaza (Eds.). Wallingford, UK and Boston, USA: CAB International, 2020. P. 496-511. DOI: 10.1079/9781780648279.0496.

9. Al-Ghasheem N., Stǎnicǎ F., Peticilǎ A.G., Venat O., Butcaru A., Al-Suwaid I., Hasan B.K., Azeb I.J., Alghasheem K. In vitro influence of cultivars and different culture media on vitrification and darkness on peach (Prunus persica L. Batsch) shoots multiplication // Scientific Bulletin. Series F. Biotechnologies. 2022. XXVI (1):59-64.

10. Casanovas M., Claveria E., Dolcet-Sanjuan R. Development of a Feasible and Efficient In Vitro Rescue Protocol for Immature Prunus spp. Embryos // Plants. 2024. 13(21):2953. DOI: 10.3390/plants13212953

11. Cirillo A., De Luca L., Izzo L., Cepparulo M., Graziani G., Ritieni A., Romano R., Di Vaio C. Biochemical and Nutraceutical Characterization of Different Accessions of the Apricot (Prunus armeniaca L.) // Horticulturae. 2023. 9:546. doi: 10.3390/horticulturae9050546.

12. Driver J.A., Kuniyuki A.H. In vitro propagation of Paradox walnut rootstock // HortScience. 1984. 19. Vol. 4. P. 507-509. DOI: 10.21273/HORTSCI.19.4.507.

13. Elmoreigi R.A., El-Maaty S.A., Hassanen S.A., Aly Hussein E.H. Effect of explant type and growth regulators on in vitro regeneration of apricot (Prunus armeniaca L.) Al-Amar rootstock // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2025. Vol. 160. P. 1. DOI: 10.1007/s11240-024-02927-x

14. Food and Agriculture Organization the United Nations (FAOSTAT), 2024. URL: https://www.fao.org/faostat/en/#data/QCL. Ссылка активна на 11. 04. 2025. – Food and Agriculture Organization the United Nations (FAOSTAT), 2024. URL: https://www.fao.org/faostat/en/#data/QCL. The link is active on 11. 04. 2025.

15. Fratianni F., Cozzolino R., d’Acierno A., Ombra M.N., Spigno P., Riccardi R., Malorni L., Stocchero M., Nazzaro F. Biochemical Characterization of Some Varieties of Apricot Present in the Vesuvius Area, Southern Italy // Frontiers in Nutrition. 2022. Vol. 9. P. 854868. DOI: 10.3389/fnut.2022.854868.

16. Gamborg O.L., Eveleigh D.E. Culture methods and detection of glucanases in suspension cultures of wheat and barley // Can. J. Biochem. 1968. Vol. 46. № 5. P. 417-421. DOI: 10.1139/o68-063.

17. İpek M., Arikan Ş., Eşitken A., Aras S. Effect of different hormones concentration on in vitro regeneration of apricot cultivars // Turkish Journal of Agriculture – Food Science and Technology. 2023. Vol. 11. № 8. Р. 1372-1379. DOI: 10.24925/turjaf.v11i8.1372-1379.6194.

18. Kramarenko L.A. Introduction of apricot to Moscow and surrounding regions: results of 32 years of work // Acta Horticulturae. 2018. № 1214. Р. 45-52. DOI: 10.17660/ActaHortic.2018.1214.8.

19. Kudělková M., Pavelková R., Ondrušiková E., Vachůn M. The issues of apricot (Prunus armeniaca L.) micropropagation // Acta Universitatis Agriculturae et Silviculturae Mendelianae Brunensis. 2017. Vol. 65. №1. P. 67-72. DOI: 10.11118/actaun2017650100.

20. Lichtenthaler H.K., Wellburn A.R. Determinations of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf extracts in different solvents // Biochemical Society Transactions. 1983. Vol. 11. № 5. Р. 591-592. DOI: 10.1042/bst0110591.

21. Lloyd G., McCown B. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture // Proceedings of the International Plant Propagators’ Society. 1980. Vol. 30. P. 421-427.

22. Manzoo I., Bhat K.M., Mir M.A., Nair N.M., Pandit A.H., Kulsum U., Quadri S., Deshmukh S., Pasternak T. The Optimization of In Vitro Culture Establishment and Shoot Proliferation of “GiSelA 17” (Prunus canescens × Prunus avium): A Novel Cherry Rootstock // Int. J. Plant Biol. 2025. Vol. 16. № 1. Р. 33. doi: 10.3390/ijpb16010033.

23. Mitrofanova I.V., Mitrofanova O.V., Lesnikova-Sedoshenko N.P., Chelombit S.V., Gorina V.M., Chirkov S.N. Some features of obtaining new breeding forms of apricot in vitro // Acta Horticulturae. 2020. Vol. 1290. P. 237-242. DOI: 10.17660/ActaHortic.2020.1290.42.

24. Monnier M. Croissance et développement des embryons globulaires de Capsella Bursa-pastoris cultivés in vitro dans un milieu à base d’une nouvelle solution minérale // Bull. Soc. Bot. France, Memoires, Coll. Morphologie. 1973. Vol. 120. P. 179–194. DOI: 10.1080/00378941.1973.10839201

25. Monnier M. Culture of Zygotic Embryos. In: In Vitro Embryogenesis in Plants // Current Plant Science and Biotechnology in Agriculture. T.A. Thorpe (Ed.). 1995. Vol. 20. P. 117-153. DOI: 10.1007/978-94-011-0485-2_4.

26. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. №3. Р. 473-497. DOI: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.

27. Pasternak T.P., Steinmacher D. Plant Growth Regulation in Cell and Tissue Culture // In Vitro, Plants. 2024. Vol. 13. P. 327. DOI: 10.3390/plants13020327.

28. Pérez-Tornero O., López J.M., Egea J., Burgos L. Effect of basal media and growth regulators on the in vitro propagation of apricot (Prunus armeniaca L.) cv. Canino // Journal Horticultural Science and Biotechnology. 2000. Vol. 75. № 3. Р. 283-286. DOI: 10.1080/14620316.2000.11511238.

29. Petri C., Alburquerque N., Burgos L. Apricot (Prunus armeniaca L.). In Agrobacterium Protocols: Methods in Molecular Biology. K. Wang (Ed.). New York: Springer, 2014. Р. 111-119. DOI: 10.1007/978-1-4939-1658-0_10.

30. Šiško M., Ternjak T., Grobelnik-Mlakar S. The Effects of Different Cytokinin Types and Their Concentration on in Vitro Growth of Apricot (Prunus armeniaca L.) Shoots // Agricultura. 2022. Vol. 19. № 1. Р. 1-6. DOI: 10.18690/agricultura.19.1.1-6.2022.