СОЗДАНИЕ И ПОДДЕРЖАНИЕ КОЛЛЕКЦИИ IN VITRO СОРТОВ ЦВЕТОЧНО-ДЕКОРАТИВНЫХ КУЛЬТУР ИЗ ФОНДОВ БОТАНИЧЕСКОГО САДА МГУ ИМ. М.В. ЛОМОНОСОВА

В статье приведены данные по созданию и поддержанию коллекций in vitro некоторых цветочно-декоративных культур – сирени, роз, древовидных пионов. Анализ морфогенетических процессов в ходе клонального микроразмножения сортов S. vulgaris показал четкую зависимость восприимчивости этой культуры к минеральному составу питательной среды и регуляторам роста цитокининового типа действия от генотипа растения. Сорта роз из различных садовых групп сохраняли высокий ростовой потенциал при культивировании на среде Мурасиге и Скуга (MS) с добавлением 0,5 мг/л BAP в течение 12 субкультивирований. Для всех культивируемых сортов древовидных пионов оптимальным оказалось использование питательной среды Woody Plant Medium (WPM) с удвоенным содержанием ионов Ca 2+ и полным исключением ионов Cl-. Оценена возможность сохранения 10 сортов сирени и 4 сортов роз в условиях замедленного роста. Показана зависимость успеха длительного культивирования сортов декоративных растений при пониженной температуре от генотипа. Так, температура 18 ºС оказалась подходящей для создания медленно растущей коллекции всех исследованных сортов роз, 14 ºС – лишь для сорта 'Nina Weibull'. Культивирование микропобегов сирени при 10 ºС в течение 5 месяцев практически не оказывало отрицательного влияния на их жизнеспособность.

1. Дворцова В.В., Ефимов С.В., Дацюк Е.И., Смирнова Е.В., Голиков К.А., Успенская М.С., Андреева В.А., Матвеев И.В. Каталог декоративных растений ботанического сада биологического факультета МГУ имени М.В.Ломоносова. М.: Товарищество научных изданий КМК, 2010. 358 с.

2. Ефимов С.В. Для чего нужны коллекции декоративных растений в ботанических садах // Сборник научных трудов ГНБС. 2017. Том 145. С. 18-25

3. Кирис Ю.Н., Полякова Т.В., Пикалева А.В., Романова Е.С. Коллекция сирени Ботанического сада МГУ имени М.В. Ломоносова // под редакцией проф. В.С. Новикова. Москва: «Пента», 2014. 64 с.

4. Катаева Н.В., Бутенко Р.Г. Клональное микроразмножение растений. М.: Наука, 1983. 96 с.

5. Криницына А. А., Успенская М. С. Влияние поливинилпирролидона и активированного угля на микроклональное размножение древовидных пионов // Ботанические сады в XXI веке: сохранение биоразнообразия, стратегия развития и инновационные решения: сборник научных материалов II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием. ИД Белгород НИУ БелГУ Белгород, 2019. С. 170-173.

6. Лободина Е.В., Супрун Е.Л., Беленко Е.А. Влияние сроков отбора эксплантов сирени (Syringa vulgaris L.) на жизнеспособность и контаминацию при введении в культуру in vitro // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2020. № 61(1). С.98-107.

7. Молканова О.И., Зинина Ю.М., Македонская Н.В, Брель Н.Г., Фоменко Т.И., Спиридович Е.В. Разработка биотехнологических приемов размножения сирени обыкновенной // Физиология и биохимия растений. 2010. Том 42, №2. С.117-124.

8. Номеров Б.А. Садовые розы. Классификация и агротехника. М.: МГУ, 1973. 152 с.

9. Патент на селекционное достижение № 10757 Сирень Syringa L. Татьянин день, выдан по заявке № 8057202 с датой приоритета 26.04.2019

10. Чурикова О.А., Криницына А.А. Некоторые особенности развития сирени в медленно растущей культуре in vitro // Известия уфимского научного центра РАН. 2018. № 3(5). С. 94-99.

11. Чурикова О.А., Криницына А.А. Изучение влияния состава питательной среды и тидиазурона на реализацию морфогенетического потенциала различных сортов сирени в культуре in vitro // Бюл. Моск. о-ва испытателей природы. отд. биол. 2019. Том 124, вып. 5. С. 55-64.

12. Чурикова О.А., Мурашев В. В. Микроклональное размножение декоративных культур: Сирень обыкновенная (Syringa vulgaris L.). Москва: Изд-во "Московский университет", 2010. 32 с.

13. Akhtar G., Jaskani M.J., Akram A. Effect of antioxidants, aminoacids and plant growth regulators on in vitro propagation of Rosa centifolia // Iran Journal of Biotechnology. 2016. Vol.14. (1). P. 51-55.

14. Beruto M., Lanteri L., Portogallo C. Micropropogation of tree peony (Paeonia suffruticosa) // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2004. Vol. 79. P. 249-255.

15. Capuana M., Di Lonardo S. In vitro conservation of chestnut (Castanea sativa) by slow growth // In Vitro Cell.Dev.Biol.-Plant. 2013. Vol. 49. P. 605-610 .

16. Gulati R. Strategies For Sustaining Plant Germplasm Evaluation And Conservation - A Review // Research Journal of Life Sciences, Bioinformatics, Pharmaceutical and Chemical Sciences. 2018. Vol. 4. (5). P. 313-320.

17. Liu Y., Tikunov Y., Schouten R. E., Marcelis L. F. M., Visser R. G. F., Bovy A. Anthocyanin biosynthesis and degradation mechanisms in solanaceous vegetables: a review // Front. Chem. 2018. Vol. 6. P. 52.

18. Lloyd G., McCown B. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture // Comb. Proc. Intl. Plant Prop. Soc. 1980. Vol. 30. P. 421-427.

19. Mitrofanova I.V., Brailko V.A., Ivanova N.N., Mitrofanova O.V. Some special features of the conservation of valuable, essential oil rose cultivars: in vitro deposition and cryopreservation // Acta Hortic. 2019. Vol. 1234. P. 195-201.

20. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. // Physiol Plant. 1962. Vol. 15 (3). Р. 473-497.

21. Zhang X.-X., Shi Q.-Q., Ji D., Niu L.-X., Zhang Y.-L. Determination of the phenolic content, profile, and antioxidant activity of seeds from nine tree peony (Paeonia section Moutan DC.) species native to China // Food Res. Int. 2017. Vol.9 7. P. 141-148.