ФИТОХИМИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ НЕКОТОРЫХ ВИДОВ СЕМЕЙСТВА PASSIFLORACEAE
https://doi.org/10.36305/2712-7788-2023-1-166-25-32
Аннотация
Статья посвящена биохимическому анализу этанольных экстрактов листьев и плодов видов P. incarnata L., P. edulis Sims. и P. caerulea L., P. ligularis Juss. и P. foetida L., принадлежащих к роду Passiflora L. С помощью методов DPPH, ABTS, окисления ß-каротина/линолевой кислоты, CUPRAC и FRAB проведено сравнительное изучение суммарного содержания фенольных веществ, флавоноидов, танинов и антиоксидантной активности. Согласно результатам, активность экстрактов по удалению АФК изменялась от 1,36 ± 0,05 до 2,43 ± 0,25 IC50 мг/мл (метод DPPH) и от 0,25 ± 0,012 до 2,48 ± 0,016 IC50 мг/мл (метод ABTS). В пробе с ß-каротином/линолевой кислотой наименьшее значение (45±1,21%) изучаемого показателя было обнаружено для экстрактов плодов P. caerulea L. FRAB-анализ показал наибольшую антиоксидантную активность (1,61±0,08 мг ТЭ/г) в экстрактах листьев P. incarnata L. Наиболее высокий уровень ингибирования обнаружен у экстрактов листьев P. incarnata L. (83±0,53%) и P. caerulea L. (81±0,8). Наивысшая антиоксидантная способность по снижению содержания ионов меди (II) выявлена в листьях P. caerulea (7,29 ± 0,33 мг ТЕ/г), а наименьшая – в экстрактах плодов P. edulis Sims. (2,47 ± 0,07 мг ТЕ/г). Результаты проведённого нами фитохимического анализа доказали, что экстракты местных видов растений, издавна применяемых при лечении различных заболеваний, богаты биологически активными соединениями, имеющими лечебное значение.
Об авторах
В. Н. БадаловаАзербайджан
З. А. Мамедова
Азербайджан
Т. А. Сулейманов
Азербайджан
М. О. Атай
Турция
Список литературы
1. Davies J. Inactivation of antibiotics and the dissemination of resistance genes. Science. 1994. 264(5157):375–382.
2. ESKOP ESKOP Monographs. The scientific Foundation for herbal Medicinal Prducts. Second Ed. Cmpletely revised and expanded. Thieme. 2003. P. 556.
3. Sajid SI, Anwar F, Shabir G, Rasul G, Alkharfy KM, Gilani A-H. Antioxidant, antimicrobial properties and phenolics of different solvent extrakts from bark, leaves and seeds of Pongamia pinnata (L)pierre. Molecules. 2012. 17(4): 3917–3932.
4. Pereira CAM, Yariwake JH, Lanças FM, Wauters JN, Tits M, Angenot L.A. HPTLC densitometric determination of flavanoids from Passiflora alata, P.edulis, P.incarnata and P.caerulea and comparison with HPLC method. Phytochem Anal. 2004. (15): 241–248.
5. Nicolls JM, Birner J, Forsell P. Passicol an antimicrobial and antifunqal agent produced by Passiflora plant Species: quantitative and qualitative range of activity. Antimicrobial Agents Chemotherapy. 1973. 3(1): 110–117.
6. Mohanasundari C., Natarajan D., Srinivasan K., Umamaheswari S. and Ramachandran A. Antibacterial properties of Passiflora foetida L. a common exotic medicinal plant. African Journal of Biotexnoloqy. 2007. 6(23): 2650–2653.
7. Vinson J.A., Zubik L., Bose P., Samman N. and Proch, J. Dried fruits: Excellent in vitro and in vivo antioxidants. Journal of the American College of Nutrition. 2005. (24): 44– 50.
8. Turan M., and Mammadov R. Antioxidant, Antimicrobial, Cytotoxic, Larvicidal and Antihelmintic Activities and Phenolic Contents of Cyclamen alpinum. Pharmacology and Pharmacy. 2018(9):100–116.
9. Re R., Pellegrini N., Proteggente A., Pannala A., Yang, M. and Rice-Evans, C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine. 199926(9-10):1231–1237.
10. Amarowicz R., Pegg R.B., Rahimi-Moghaddam P., Barl B., Weil J.A. Free-radical scavenging capacity and antioxidant activity of selected plant species from the Canadian prairies. Food Chemistry. 2004. 84(4):551–562.
11. Apak R., Güclü, K., Özyürek, M., and Karademir, S.E. Novel total antioxidant capacity index for dietary polyphenols and vitamins C and E, using their cupric ion reducing capability in the presence of neocuproine: CUPRAC method. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2004. 52(26): 7970–7981.
12. Aryal S., Baniya M.K., Danekhu K., Kunwar P., Gurung R., and Koirala N. Total phenolic content, flavanoid content and antioxidant potential of wild vegetables from Western Nepal. Plants. 2019. 8(4): 96.
13. Benzie I.F., Strain J.J. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical Biochemistry. 1996. 239(1): 70–76.
14. Halliwell B. Food-derived antioxidants: How to evaluate their importance in food and in vivo. Handbook of Antioxidants, 2001. 690 p.
15. Can A., Özçelik B. ve Güneş G. Meyve sebzelerin antioksidan kapasiteleri. GAP IV. Tarım Konqresi. Şanlıurfa. 2005. 1458–1461
16. Singleton V.L. and Rossi J.A. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic- phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture. 1965. 16(3): 144–158.
17. Shahid W, Durrani R, Iram S., M, Khan F. Antibacterial activity in vitro of medicinal plants. Sky J Microbiol Res. 2013. 1(2): 5–21.
18. Yusif Kərimov, Tahir Süleymanov, Cavanşır İsayev, Cəmil Xəlilov. Farmakoqnoziya. 2010. 738: 29–31.
19. Heim K.E., Taglıafero A.R., and Bobilya D.J. Flavanoid antioxidants: Chemistry, metabolism and structure-activity relationships. The Journal of Nutritional Biochemistry. 2002. 13(10): 572–584
20. Bekir J., Mars M., Souchard J.P., and Boujila J. Assessment Of Antioxidant, Anti- İnflammatory, Anti-Cholinesterase and Cytotoxic Activites of Pomegranate (Punica granatum) Leaves. Food and Chemical Toxicoloqy. 2003. 201355: 470–475.
21. Wosch L. Santos K.C., Imig D.C., Santos CAM. Comparative study of Passiflora taxa leaves: II, A Chromatigraphic profile. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2017. 27: 40–49.
22. Pertuzatti P.B., Sganzerla M., Jaques A.C., Barcia M.T., Zambiazi R.C. Carotenoids, tocopherols and ascorbic acid content in yellow passion fruit (Passiflora edulis) grown under different cultivation systems. LWT-Food Science and Technology. 2015. 64: 259–263.
23. Gomes S.V.F., Portugal L.A., Anjos J.P., et al.. Accelerated solvent extraction of phenolic compounds exploiting a Box-Behnken design and quantification of five flavonoids by HPLC-DAD in Passiflora species. Microchemical Journal. 2017. 132: 28–35.
24. Ayres ASFSJ, Araujo LLS, Soares TC, et al. Comparative central effects of the aqueous leaf extract of two populations of Passiflora edulis Revista Brasileira de Farmacognosiya. 2015. 25: 499–505.
25. Rudnicki M., Silveira M.M, Pereira T.V., Oliveira M.R., Reginatto F.H., Dal-Pizzol F., Moreira J.C.F. Protective effects of Passiflora alata extract pretreatment on carbon tetrachloride induced oxidative damage in rats. Food Chem. Toxicol. 2007. 45: 656–661.
26. Masteikova R., Bernatoniene J., Bernatoniene R.; Velziene S. Antiradical activities of the extract of Passiflora incarnata. Acta Pol. Pharm. 2008. 65: 577–583.
27. Yohanes Tandoro, Paini International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 2020. 12: 6.
28. Guseinov M.D., Svistunov A.A., Bobkova N.V. Flavonoids in Passiflora incarnata L. Dry Extract of RussianOrigin. Pharmacognosy Journal. 2019. 11(5): 1143–1147.
29. Mijin Kim, Hee-Sook, Hae-Hyeog Lee, Tae-Hee Kim. Role identification of Passiflora incarnate Linnaeus: A Mini Review. J Menopausal Med. 2017. 23(3): 156–159.
Рецензия
Для цитирования:
Бадалова В.Н., Мамедова З.А., Сулейманов Т.А., Атай М.О. ФИТОХИМИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ НЕКОТОРЫХ ВИДОВ СЕМЕЙСТВА PASSIFLORACEAE. Биология растений и садоводство: теория, инновации. 2023;(1 (166)):25-32. https://doi.org/10.36305/2712-7788-2023-1-166-25-32
For citation:
Badalova V.N., Mammadova Z.A., Suleymanov T.A., Mehmet O.A. PHYTOCHEMICAL ANALYSIS OF SOME SPECIES BELONGING TO THE PASSIFLORACEAE FAMILY. Plant Biology and Horticulture: theory, innovation. 2023;(1 (166)):25-32. (In Russ.) https://doi.org/10.36305/2712-7788-2023-1-166-25-32