ПОЛИЦЕТИЛЕНОВЫЕ СОЕДИНЕНИЯ РАСТЕНИЙ И ПЕРСПЕКТИВЫ ИХ ИЗУЧЕНИЯ
https://doi.org/10.36305/2712-7788-2022-4-165-82-96
Аннотация
В статье представлены современные данные по изучению полиацетиленовых соединений растительного происхождения. Полиацетилены формируют отчетливую специализированную группу природных соединений, которые обнаружены в 24 семействах высших растений, причём в наибольшем количестве и разнообразии в семействах Asteraceae, Apiaceae, Araliaceae, Campanulaceae, Olacaceae, Pittosporaceae и Santalaceae. Статья содержит информацию о структуре, физико-химических свойствах, особенностях накопления и локализации в органах и частях растений, биосинтезе, динамике накопления, обнаружении, выделении и идентификации, а также об основных фармакологических свойствах растительных полиацетиленов. Представленная информация может быть использована и для разработки методик установления подлинности и оценки качества лекарственного растительного сырья, содержащего полиацетилены в качестве основной группы действующих веществ. Обсуждаются перспективы дальнейшего изучения этих соединений как существенного резерва для поиска и разработки новых лекарственных средств. Отмечается необходимость направленных селекционных, генетических исследований по получению новых сортов лекарственных растений - источников новых видов лекарственного растительного сырья, содержащего полиацетиленовые соединения.
Об авторе
Дмитрий Алексеевич Коновалов
Пятигорский медико-фармацевтический институт - филиал ФГБОУ ВО ВолгГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Список литературы
1. Коновалов Д.А. Ароматические полиацетиленовые соединения сем. Asteraceae и их хемотаксономическое значение // Растительные ресурсы. 1996. Т. 32, вып. 4. С. 84-98
2. Коновалов Д.А. Полиацетиленовые соединения растений семейства Asteraceae (обзор) // Химико-фармацевтический журнал. 2014б. Т. 48. № 9. С. 36-53
3. Коновалов Д.А. Природные полиацетиленовые соединения // Фармация и фармакология. 2014а. № 4 (5). С. 23-48
4. Коновалов Д.А., Коновалова О.А., Челомбитько В.А. Спектрофотометрический метод количественного определения капиллина в эфирном масле Artemisia scoparia Waldst. et Kit. // Химико-фармацевтический журнал. 1992. Т. 26. № 3. С. 73-75
5. Коновалов Д.А., Насухова А.М., Оробинская В.Н. Биологические и фармакологические свойства полиацетиленовых соединений высших растений // Современная наука и инновации. 2017. № 3 (19). С. 177-191
6. Коновалов Д.А., Оробинская В.Н., Писаренко О.Н. Антиоксиданты плодов и овощей // Современная наука и инновации. 2013. № 4 (4). С. 76-83
7. Коновалов Д.А. Разработка методов хемотаксономического прогнозирования поиска биологически активных веществ в растениях сем. астровые (роды Тысячелистник, Полынь и др.) // Aвтореферат диссертации на соискание ученой степени доктора фармацевтических наук. Пятигорская государственная фармацевтическая академия. Пятигорск, 2000. 46 c
8. Насухова А.М., Коновалов Д.А. Природные полиацетиленовые соединения. Обзор начального этапа исследований // Фармация и фармакология. 2014. №1. С. 3-8
9. Природные полиацетиленовые соединения (классификация, биогенез, идентификация, распространение): монография / Д. А. Коновалов. Москва: Знание-М, 2021. 190 с
10. Растительные ресурсы СССР: Цветковые растения, их химический состав, использование; Семейство Asteraceae (Compositae). СПб.: Наука, 1993. 352 с
11. Харборн Дж. Введение в экологическую биохимию. М.: Наука, 1985. 189 с
12. Baranska M., Schulz H. Spatial tissue distribution of polyacetylenes in carrot root. Analyst. 2005. Vol. 130(6). P. 855-859
13. Baranska M., Schulz H., Christensen L.P. Structural changes of polyacetylenes in American ginseng root can be observed in situ by using Raman spectroscopy // Journal of agricultural and food chemistry. 2006. Vol. 54 (10). P. 3629-3635
14. Baranska M., Schulz H., Baranski R., Nothnagel T., Christensen L.P. In situ simultaneous analysis of polyacetylenes, carotenoids and polysaccharides in carrot roots // Journal of Agricultural and food Chemistry 2005. Vol. 53 (17). P. 6565-6571
15. Bohlmann F. Naturally-occurring acetylenes, in Lam. Chemistry and Biology of Naturally-Occurring Acetylenes and Related Compounds (NOARC) // Bioactive Molecules. 1988. Vol. 7. P. 1-19
16. Bohlmann F., Burkhardt T., Zdero C. Naturally Occurring Acetylenes. London, 1973. 547 p
17. Christensen L.P. Biological activities of naturally occurring acetylenes and related compounds from higher plants // Recent Res. Devel. Phytochem. 1998. Vol. 2. P. 227-257
18. Christensen L.P., Jakobsen H.B. Polyacetylenes: Distribution in higher plants, pharmacological effects and analysis // Chromatographic Science Series. 2008. Vol. 99. P. 757-816
19. Christensen L.P. Bioactive C17 and C18 acetylenic oxylipins from terrestrial plants as potential lead compounds for anticancer drug development // Molecules. 2020). Vol. 25(11). Art. 2568
20. Christensen L.P., Brandt K. Bioactive polyacetylenes in food plants of the Apiaceae family: occurrence, bioactivity and analysis //j. Pharm. Biomed. Anal. 2006. Vol. 41. P. 683-693
21. Czepa A., Hofmann T. Quantitative studies and sensory analyses on the influence of cultivar, spatial tissue distribution, and industrial processing on the bitter off-taste of carrots (Daucus carota L) and carrot products // J Agric Food Chem. 2004. Vo l. 52. P. 4508-4514
22. Dembitsky V.M. Anticancer activity of natural and synthetic acetylenic lipids // Lipids. 2006. Vol. 41, N.10. P. 883-924
23. Ebel J. Phytoalexin synthesis: the biochemical analysis of the induction process // Ann Rev Phytopathol. 1986. Vol. 24. P.235-264
24. Gao X., Wang P., Wu L., Liu J., Fang Y., Tian J., Zhou Y., Du G. & Qin X. Pharmacokinetics-pharmacodynamics and tissue distribution analysis of Low Polar extract of Xiaoyao Powder combined with rat model of chronic unpredictable mild stress // Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies. 2019. Vol. 42. P. 7-8
25. Garrod B., Lewis B.G. Cis-heptadeca-1,9-diene-4,6-diyne-3,8-diol, an antifungal polyacetylene from carrot root tissue // Physiol Plant Pathol. 1978. Vol. 13. P. 241-246
26. Garrod B., Lewis B.G. Location of the antifungal compound falcarindiol in carrot root tissue // Trans Br Mycol Soc. 1979. Vol. 72. P. 515-517
27. Hansen-Møller J., Hansen S.L., Christensen L.P., Jespersen L., Brandt K., Haraldsdóttir J. Quantification of polyacetylenes by LC-MS in human plasma after intake of fresh carrot juice (Daucus carota L.) // DIAS report Horticulture. 2002. Vol. 29. P. 137-138
28. Haraldsdóttir J., Jespersen L., Hansen-Møller J., Hansen S.L., Christensen L.P., Brandt K. Recent developments in bioavailability of falcarinol // DIAS report Horticulture. 2002. Vol. 29. P. 24-28
29. Hostettmann K., Marston, A., Twenty years of research into medicinal plants: results and perspectives // Phytochem. Rev. 2002. Vol. 1. P. 275
30. Konovalov D.A., Chelombit'ko V.A. The composition of essential oil of Artemisia scoparia Waldst et Kit. during growth // Rastitelnye Resursy. 1991. Vol. 27. Vol. 1. P. 135-139
31. Lin M., Zhang W., Su J. Toxic polyacetylenes in the genus Bupleurum (Apiaceae) distribution, toxicity, molecular mechanism and analysis. J. Ethnopharmacol. 2016. Vol. 193. P. 566-573
32. Minto R.E., Blacklock B.J. Biosynthesis and Function of Polyacetylenes and Allied Natural Products // Prog. Lipid Res. 2008. Vol. 47, Is.4. P. 233-306
33. Mullins A.J., Webster G., Kim H.J., Zhao J., Petrova Y.D., Ramming C.E., Jenner M., Murray J., Connor T.R., Hertweck C., Challis G.L., Mahenthiralingam E. Discovery of the pseudomonas polyyne protegencin by a phylogeny-guided study of polyyne biosynthetic gene cluster diversity // MBio. 2021. Vol. 12. Art. 71521
34. Saita T., Matsunaga, H., Yamamoto, H., Nagumo, F., Fujito, H., Mori, M. and Katano, M. (1994). A highly sensitive enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for antitumor polyacetylenic alcohol, panaxytriol // Biological and Pharmaceutical Bulletin, 17(6), pp. 798-802
35. Santos J.A., Santos C.L., Freitas F., Menezes P.H., Freitas, J.C. Polyacetylene Glycosides: Isolation, Biological Activities and Synthesis // Chem. Rec. 2022. Vol. 22. Art. e202100176
36. Singh R., Tiwari P., Sharma B., Guerrero-Perilla C., Coy-Barrera E. Analysis of polyacetylenes // In Recent Advances in Natural Products Analysis. 2020. P. 707-722)
37. Wang Y. Polyacetylenes from Artemisia borealis and their biological activities // Phytochemistry. 1990. Vol. 29. P. 3101
38. Warner S. Database of polyacetylene-containing foods for estimation of population intake // Proceedings of the Nutrition Society. 2016. Vol. 75. №. OCE3. E93
39. Xie Q., Wang C. Polyacetylenes in herbal medicine: A comprehensive review of its occurrence, pharmacology, toxicology, and pharmacokinetics (2014-2021) // Phytochemistry. 2022. Vol. 201. Art. 113288
40. Коновалов Д.А. Цитотоксические свойства полиацетиленовых соединений растений. II // Растительные ресурсы. 2014. Т. 50. № 2. С. 279-296
41. Rollinger J.M. Lignans, phenylpropanoids and polyacetylenes from Chaerophyllum aureum L. (Apiaceae) // Z. Naturforsch. 2003.Vol. 553. P. 58
Рецензия
Для цитирования:
Коновалов Д.А. ПОЛИЦЕТИЛЕНОВЫЕ СОЕДИНЕНИЯ РАСТЕНИЙ И ПЕРСПЕКТИВЫ ИХ ИЗУЧЕНИЯ. Биология растений и садоводство: теория, инновации. 2022;(4 (165)):82-96. https://doi.org/10.36305/2712-7788-2022-4-165-82-96
For citation:
Konovalov D.A. Plant polycethylene compounds and prospects for their study. Plant Biology and Horticulture: theory, innovation. 2022;(4 (165)):82-96. (In Russ.) https://doi.org/10.36305/2712-7788-2022-4-165-82-96
Просмотров:
132
Послать статью по эл. почте 