РАЗРАБОТКА И ОПТИМИЗАЦИЯ МЕТОДА КЛОНАЛЬНОГО МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ САДОВЫХ ФОРМ ФУНДУКА (CORYLUSSP.)

Фундук является экономически важной в мире орехоплодной культурой. Размножение традиционным способом сортовых саженцев фундука дорогостояще и трудоемко в виду потребности в огромных площадях маточников для черенкования и низкой укореняемости черенков. Перспективной является разработка и внедрение технологии клонального микроразмножения in vitro фундука. Использование данного метода способствует массовому получению однородного, чистого от инфекций посадочного материала фундука для закладки маточников. В ходе исследований нами был оптимизирован протокол клонального микроразмножения трех сортов фундука. Было установлено, что для культивирования исследуемых сортов наиболее сбалансированной по минеральному составу является среда DKW дополненная 3,5 мг/л 6- БАП, 1,0 мг/л ГК и 0,3 мл/л ИУК; модификация среды NRM дополненная 1,0 мг/л ГК + 1,0 мг/л НУК + 2,0 мг/л ИМК эффективно способствует ризогенезу из эксплантов; ГК проявила синергетическое воздействие совместно с НУК на укоренение микропобегов фундука, к 4-ой неделе культивирования количество побегов обладающих корнями достигало 90-100%; в условиях климокамеры с использованием субстрата торф с песком (50:50) эффективность адаптации к почвенным условиям составила у сорта КАХ-29 92%, у сорта Закаталы 80%, а у сорта Хачмас 36%.

адаптация, клональное микроразмножение, питательные среды, регуляторы роста, размножение, укоренение, фундук, in vitro, in vivo

1. Карачанский А.Т., Чепурной В.С., Махно В.Г. Совершенствование сортимента для промышленного фундуководства на юге России // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2017. № 47 (5). С. 68-79

2. ФАО, 2007 [Электронный ресурс]. - Режим доступа http://www.fao.org/home/en/

3. Andres H., Fernandez B., Rodriguez R., Rodriguez A. Phytohormone contents in Corylus avellana and their relationship to age and other developmental processes // Plant Cell Tissue Organ Cult. 2002. Vol. 70 (2). P. 173-180

4. Bassil N., Mok D., Mok M., Rebhuhn B. Micropropagation of the hazelnut, Corylus avellana // Acta Horticulturae. 1991. Vol. 300. P. 137-140

5. Damiano C., Caternaro J., Giovinazzi J., Fratarelli A., Caboni E. Micropropagation of hazelnut (Corylus avellana L.) // Acta Horticulturae. 2005. Vol. 686 (1). P. 221-226

6. Díaz-Sala C., Rey M., Rodríguez R. In vitro establishment of a cycloclonal chain from nodal segments and apical buds of adult hazel (Corylus avellana L.) // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1990. Vol. 23 (3). P. 151-157

7. Driver J.A., Kuniyuki A.H. In Vitro Propagation of Paradox walnut Rootstock // HortScience. 1984. Vol. 19. P. 507-509

8. Gao X., Liu J., Ling Q. Tissue culture and rapid propagation of hybrid hazelnut (Corylus heterophylla x C. avellana) // Acta Horticulturae. 2008. Vol. 771 (2). P. 207-211

9. Garrison W., Dale A., Saxena P.K. Improved shoot multiplication and development in hybrid hazelnut nodal cultures by ethylenediamine di-2-hydroxy-phenylacetic acid (Fe-EDDHA) // Canadian Journal of Plant Science. 2013. Vol. 93 (3). P. 511-521

10. Lloyd G., McCown B.Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture // International Plant Propagators' Society. 1980. Vol. 30. P. 421-427

11. Murashige T., Skoog F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures // Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. P. 473-497

12. Nas M.N, Read P.E. Micropropagation of hybrid hazelnut: Medium composition, physical state and iron source affect shoot morphogenesis, multiplication and explant vitality // Acta Horticulturae. 2001. Vol. 556 (36). P. 252-257

13. Nas M.N., Read P.E. A hypothesis for the development of a defined tissue culture medium of higher plants and micropropagation of hazelnuts // Scientia Horticulturae. 2004. Vol. 101. P. 189-2004

14. Shukla M.R., Jones A.M.P., Sullivan J.A., Liu C., Gosling S., Saxena P.K. In vitro conservation of American elm (Ulmus americana): Potential role of auxin metabolism in sustained plant proliferation // Canadian Journal of Forest Research. 2012. Vol. 42 (4). P. 686-697

15. Uchendu E.E, Paliyath G., Brown D.C., Sahena P.K. In vitro propagation of North American ginseng (Panax quinquefolius L.) // In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant. 2011. Vol. 47. P. 710-718

16. Yu X., Reed B.M. A micropropagation system for hazelnuts (Corylus species) // Hortscience 1995. 30(1): 120-123

17. Ziegler P., Adelmann K., Zimmer S., Schmidt C., Appenroth K.-J. Relative in vitro growth rates of duckweeds (Lemnaceae) - the most rapidly growing higher plants // Plant Biol. 2015. Vol. 17 (1). P. 33-41